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    破解固定后染色難題的五大策略

    更新時間:2025-03-31點擊次數:627

    一、抗原修復技術

    原理:通過高溫(熱修復)或蛋白酶K處理,破壞交聯鍵,暴露被封閉的抗原表位。

    方法:

    熱修復:將切片浸入pH 6.0檸檬酸鹽緩沖液,微波加熱至95℃維持15分鐘。

    酶消化:使用0.05%-0.1%胰蛋白酶37℃處理10-30分鐘(適用于疏松組織)。

    二、優化固定條件

    固定劑選擇:

    固定劑

    適用染色類型

    缺點

    4%多聚甲醛

    常規免疫組化

    強交聯,需抗原修復

    乙醇/丙酮

    細胞涂片、冰凍切片

    穿透力差,易致細胞收縮

    鋅鹽固定液

    磷酸化蛋白保留

    成本高,保存期短

    固定時間控制:

    小塊組織(<5mm3)固定不超過24小時,避免過度交聯。

    三、穿透增強處理

    去垢劑應用:0.1%-0.3% Triton X-100處理10分鐘,增加細胞膜通透性。

    凍融循環:將組織反復凍融(-80℃?室溫),破壞致密結構(慎用于脆弱樣本)。

    四、封閉內源性干擾物

    內源性過氧化物酶:3% H?O?室溫處理10分鐘。

    自發熒光:0.1% Sudan Black B乙醇溶液浸泡10分鐘(適用于醛基固定樣本)。

    五、試劑與染色方案適配

    抗體驗證:選擇經固定組織驗證的一抗(查閱文獻或說明書標注“IHC/IF validated")。

    染料適配:

    核酸染料:優先選用抗固定型染料(如DAPI替代Hoechst)。

    熒光標記:避免使用與自發熒光波長重疊的探針(如Cy5替代FITC)。


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